2024年4月30日，美国南加州大学凯克医学院博徳干细胞研究所李中伟组在Cell Stem Cell杂志上发表报道一种新的二维培养方法，通过小分子化合物调控p38和YAP信号通路，实现长期体外扩增培养原代小鼠肾单元祖细胞，人原代肾单元祖细胞及人多能干细胞来源的诱导型肾单元祖细胞。这一肾单元祖细胞体外扩增培养系统进一步揭示了足状突细胞的可塑性。基于扩增的肾单元祖细胞进行的靶向全基因组CRISPR screens遗传筛选找到了新的肾脏发育与疾病相关基因。扩增后的诱导型肾单元祖细胞跟体内的人类肾单元祖细胞更加相似。这些细胞能够自发分化为高纯度的新型肾单元类器官。这些肾单元类器官含有极少的脱靶细胞，且诱导分化出成熟表征的足状突细胞。此外，基于扩增的肾单元祖细胞构建的多囊性肾病微型类器官能够用于药物筛选，找到了一个潜在的治疗囊性肾病的小分子。诱导型肾单元祖细胞的长期体外扩增培养为进一步的人工合成肾脏提供重要的干细胞资源。
此团队在2016年首次报道了利用三维培养体系扩增肾单元祖细胞的方法。然而肾单元祖细胞的三维培养体系高度依赖细胞间的相互作用，不能形成单细胞克隆，这极大地限制了这些扩增的肾单元祖细胞的应用，比如进行全基因组遗传筛选。此外，人多能干细胞来源的诱导型肾单元祖细胞能够为体外研究人肾单元祖细胞及未来人工合成肾脏提供了极其重要的干细胞资源，且能够为个体化精准治疗提供可能，然而，至今尚未发展出体外长期扩增培养诱导型肾元祖细胞的细胞培养体系。围绕以上肾脏再生领域的瓶颈问题，该团队尝试利用小分子化合物构建对肾单元祖细胞长期体外扩增培养的二维培养体系。
基于肾单元祖细胞三维培养体系，通过微调WNT信号通路，以及对p38信号通路进行抑制，该团队成功研发出能够支持小鼠肾单元祖细胞体外二维扩增培养的细胞培养体系。该培养体系能够帮助构建原代小鼠肾单元祖细胞系，不限小鼠遗传背景，不依赖细胞分选纯化，甚至能够从整个小鼠胚胎肾脏或单个肾单元祖细胞构建肾单元祖细胞系。该培养体系能够支持小鼠肾单元祖细胞快速高纯度体外扩增至少1个月，扩增~1014-1017倍，转录组分析揭示扩增的肾单元祖细胞高度相似E11.5-E13.5原代小鼠肾元祖细胞，并且扩增的肾单元祖细胞展示强大的肾单元发生能力(nephrogenic potential)，形成肾单元类器官。
在此基础上该团队发现，用小分子化合物TRULI激活YAP信号通路，能够在体外长期扩增培养人的肾单元祖细胞。该培养体系不仅能构建原代人肾单元祖细胞系，更重要的是，这一培养体系也支持人多能干细胞来源的诱导型肾单元祖细胞的长期体外扩增培养。该培养体系能够支持人肾单元祖细胞体外快速高纯度扩增至少3个月，且转录组分析揭示扩增后的人肾单元祖细胞高度相似原代人肾单元祖细胞。培养的诱导型肾单元祖细胞能够形成单细胞克隆，直接有效的进行CRISPR 介导的基因编辑，这极大地促进了这些扩增的诱导型肾单元祖细胞的广泛应用。
图A: 小鼠肾单元祖细胞系构建及其各种功能性应用；图B: 人多能干细胞来源的诱导性肾单元祖细胞系构建及其各种功能性应用
进一步以扩增的诱导型肾单元祖细胞为基础，成功构建出高纯度的新型肾单元类器官。相比于已报道的肾脏类器官，扩增的诱导型肾元祖细胞来源的肾单元类器官有3个显著的特征：
1.含极其少的脱靶细胞；
2. 诱导产生成熟的足状突细胞；
3.未有残留的未分化的肾单元祖细胞。
该类新型肾单元类器官的这些优势特征使得体外研究某些肾脏疾病病理机理成为可能，例如鉴于类器官中存在的成熟的足状突细胞，可以模拟构建艾波特综合症(Alport syndrome)疾病类器官模型，探究其病理发生机制及药物筛选；该类器官所具有的高纯度特征可用以探究细胞特异性病变所引起的肾脏疾病，而规避脱靶细胞所带来的影响。
扩增的诱导型肾元祖细胞来源的肾单元类器官形态(图A)；荧光染色， 蓝色结构为足状突细胞，绿色结构为前端小管，红色结构为远端小管(图B)；及单细胞测序(图C)
论文揭示肾单元祖细胞体外扩增培养体系能够重编程分化的肾脏细胞成肾元祖细胞样细胞(reprogrammed nephron progenitor cell，rNPC)。小鼠肾单元祖细胞体外扩增培养体系能够重塑Wnt4+细胞成肾单元祖细胞样细胞，而人肾单元祖细胞体外扩增培养体系能够重编程类器官来源的足状突细胞或原代胚胎足状突细胞成肾单元祖细胞样细胞。转录组测序分析展示这些肾单元祖细胞样细胞高度相似扩增的诱导型肾元祖细胞和原代肾元祖细胞，并且展示强大的肾单元发生能力，形成肾单元类器官。
鉴于该肾单元祖细胞体外扩增培养体系支持二维培养，该团队成功地对扩增的小鼠肾单元祖细胞进行靶向全基因组的CRISPR screen遗传筛选，揭示肾单元祖细胞自我更新，肾脏发育和疾病发生相关基因群，例如先天性肾脏和尿路畸形(CAKUT)或维尔姆斯氏瘤(Wilms tumor) 相关基因群。同时，亦揭示表观调控蛋白KMT2A和KAT6A在肾单元祖细胞自我更新中扮演着重要的角色。
此外，利用这些扩增的肾元祖细胞构建多囊性肾病类器官模型。扩增的肾单元祖细胞来源的多囊性肾病类器官在分子水平，代谢水平及病理表型上很好地重塑了多囊性肾病病变过程，其囊泡形成(Cyst formation)率接近100%，而在野生型肾元祖细胞来源的类器官中却很少有囊泡形成。结合迷你微孔板(Aggrewell)的使用，该团队成功地产生成千上万个微型多囊性肾病类器官用于高通量的药物筛选，并筛选出小分子化合物PTC-209显著地抑制囊泡形成和生长。
此研究对肾脏研究领域具有3个深远的意义:
1. 大量扩增的诱导型肾单元祖细胞为人工肾合成提供了重要的干细胞来源;
2.全基因组范围内 CRISPR-Cas9遗传筛选对揭示由肾单元祖细胞自我更新异常引发的肾脏疾病病理机制提供关键的线索，解决无法体外研究人肾单元祖细胞发育的“瓶颈”问题;
3.以扩增诱导型肾单元祖细胞构建的高纯度肾脏疾病类器官模型，对揭示人类肾脏疾病病理发生机制及大范围药物筛选提供了重要的平台，利于体外研究人肾脏疾病。
美国南加州大学李中伟实验室介绍
实验室专注肾脏发育、疾病与再生研究，运用人干细胞和类器官模型，小鼠模型，基因编辑技术，结合单细胞组学、功能基因组学研究肾脏的发育机制，建立肾脏的疾病模型并进行药物筛选。实验室的长远目标是利用干细胞和工程技术在体外合成可移植的肾脏。欢迎对相关方向感兴趣的研究生、博士后以及访问学者加入本实验室(http://lilab.usc.edu)。
参考文献
1.Costantini, F., and Kopan, R. (2010). Patterning a complex organ: branching morphogenesis and nephron segmentation in kidney development. Developmental cell 18, 698-712.2.McMahon, A.P. (2016). Development of the mammalian kidney. Current topics in developmental biology 117, 31-64.3.Liyanage, T., Ninomiya, T., Jha, V., Neal, B., Patrice, H.M., Okpechi, I., Zhao, M.-h., Lv, J., Garg, A.X., and Knight, J. (2015). Worldwide access to treatment for end-stage kidney disease: a systematic review. The Lancet 385, 1975-1982.4.Taguchi, A., Kaku, Y., Ohmori, T., Sharmin, S., Ogawa, M., Sasaki, H., and Nishinakamura, R. (2014). Redefining the in vivo origin of metanephric nephron progenitors enables generation of complex kidney structures from pluripotent stem cells. Cell stem cell 14, 53-67.5.Takasato, M., Er, P.X., Chiu, H.S., Maier, B., Baillie, G.J., Ferguson, C., Parton, R.G., Wolvetang, E.J., Roost, M.S., and Chuva de Sousa Lopes, S.M. (2015). Kidney organoids from human iPS cells contain multiple lineages and model human nephrogenesis. Nature 526, 564-568.6.Morizane, R., Lam, A.Q., Freedman, B.S., Kishi, S., Valerius, M.T., and Bonventre, J.V. (2015). Nephron organoids derived from human pluripotent stem cells model kidney development and injury. Nature biotechnology 33, 1193-1200.7.Li, Z., Araoka, T., Wu, J., Liao, H.-K., Li, M., Lazo, M., Zhou, B., Sui, Y., Wu, M.-Z., and Tamura, I. (2016). 3D culture supports long-term expansion of mouse and human nephrogenic progenitors. Cell stem cell 19, 516-529.
开放转载欢迎授权转载，谢绝复制粘贴— END —
- 科普 情怀 责任 -
